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实时荧光定量PCR具体实验步骤1

时间:2017-08-02 浏览次数:2559

1 样品RNA的抽提

①取冻存已裂解的细胞,室温放置5分钟使其完全溶解。

②两相分离 每1ml的TRIZOL试剂裂 解的样品中加入0.2ml的仿,盖紧管盖。手动剧烈振荡管体15秒后,15到30℃孵育2到3分钟。4℃下12000rpm离心15分钟。离心后 混合液体将分为下层的红色酚仿相,中间层 以及无色水相上层。RNA全部被分配于水相中。水相上 层的体积大约是匀浆时加入的TRIZOL试剂的60%。

③RNA沉淀 将水相 上层转移到一干净无RNA酶的离心管中。加等体 积异丙醇混合以沉淀其中的RNA,混匀后15到30℃孵育10分钟后,于4℃下12000rpm 离心10分钟。此时离心前不可见的RNA沉淀将 在管底部和侧壁上形成胶状沉淀块。

④RNA清洗 移去上清液,每1mlTRIZOL试剂裂 解的样品中加入至少1ml的75%乙醇(75%乙醇用DEPCH2O配制),清洗RNA沉淀。混匀后,4℃下7000rpm离心5分钟。

⑤RNA干燥 小心吸 去大部分乙醇溶液,使RNA沉淀在 室温空气中干燥5-10分钟。

⑥溶解RNA沉淀 溶解RNA时,先加入无RNA酶的水40μl用枪反复吹打几次,使其完全溶解,获得的RNA溶液保存于-80℃待用。

2 RNA质量检测

1)紫外吸收法测定

先用稀释用的TE溶液将 分光光度计调零。然后取少量RNA溶液用TE稀释(1:100)后,读取其在分光光度计260nm和280nm处的吸收值,测定RNA溶液 浓度和纯度。

① 浓度测定

A260下读值为1表示40 ?g RNA/ml。样品RNA浓度(?g/ml)计算公式为:A260 ×稀释倍数× 40 ?g/ml。具体计算如下:

RNA溶于40 ?l DEPC水中,取5ul,1:100稀释至495?l的TE中,测得A260 = 0.21

RNA 浓度= 0.21 ×100 ×40 ?g/ml = 840 ?g/ml 或 0.84 ?g/?l

取5ul用来测量以后,剩余样品RNA为35 ?l,剩余RNA总量为:

35 ?l × 0.84 ?g/?l = 29.4 ?g

②纯度检测

RNA溶液的A260/A280的比值即为RNA纯度,比值范围1.8到2.1。

2)变性琼 脂糖凝胶电泳测定

①制胶

1g琼脂糖溶于72ml水中,冷却至60℃,10 ml的10× MOPS电泳缓冲液和18 ml的37% 甲醛溶液(12.3 M)。

10×MOPS电泳缓冲液

浓度  成分

0.4M  MOPS,pH 7.0

0.1M  乙酸钠

0.01M  EDTA

灌制凝胶板,预留加 样孔至少可以加入25 ?l溶液。胶凝后取下梳子,将凝胶 板放入电泳槽内,加足量的1×MOPS电泳缓 冲液至覆盖胶面几个毫米。

②准备RNA样品

取3?gRNA,加3倍体积 的甲醛上样染液,加EB于甲醛 上样染液中至终浓度为10?g/ml。加热至70℃孵育15分钟使样品变性。

③电泳

上样前凝胶须预电泳5min,随后将 样品加入上样孔。5-6V/cm电压下2h,电泳至 溴酚兰指示剂进胶至少2-3cm。

④紫外透 射光下观察并拍照

28S和18S核糖体RNA的带非常亮而浓(其大小 决定于用于抽提RNA的物种类型),上面一 条带的密度大约是下面一条带的2倍。还有可 能观察到一个更小稍微扩散的带,它由低分子量的RNA(tRNA和5S核糖体RNA)组成。在18S和28S核糖体 带之间可以看到一片弥散的EB染色物质,可能是由mRNA和其它异型RNA组成。RNA制备过程中如果出现DNA污染,将会在28S核糖体RNA带的上面出现,即更高 分子量的弥散迁移物质或者带,RNA的降解表现为核糖体RNA带的弥散。用数码 照相机拍下电泳结果。

3 样品cDNA合成

①反应体系

序号  反应物  剂量

1  逆转录buffer  2μl

2  上游引物  0.2μl

3  下游引物  0.2μl

4  dNTP  0.1μl

5  逆转录酶MMLV  0.5μl

6  DEPC水  5μl

7  RNA模版  2μl

8  总体积  10μl

轻弹管底将溶液混合,6000rpm短暂离心。

②混合液 在加入逆转录酶MMLV 之前先70℃干浴3分钟,取出后 立即冰水浴至管内外温度一致,然后加逆转录酶0.5μl,37℃水浴60分钟。

③取出后立即95℃干浴3分钟,得到逆 转录终溶液即为cDNA溶液,保存于-80℃待用